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Le cahier de texte des BTK-22013-2014
1
date Heure I Heure II TP
5-6 / 09
Enzymologie.Rappels de 1ère année3. Les facteurs qui influencent l'activité enzymatique. 3.1. Les fact physico-chimiques.
Bilan sur les rapports et PowerPoint des stages.
12-13 / 09 BTS-0TP 01
Dosages de protéinesScatchard.
19-20 / 09 Correction du DS-0 2 Synthèse des protéines. 2.1. Biosynthèse.
TP 01
Dosages de protéinesScatchard.
26-27/09 3.2. Influence de la C en enzyme. 3.3. Influence de la C en Pdt.
2.2. Translocation.TP 02
b-galactosidase
03-04/10 3.4. Effecteurs. 3.4.1. I.N.C.
2.3. GlycosylationTP 02
b-galactosidase
Avant
2
date Heure I Heure II TP
10-11 / 10 3.4.2. I.C. 3.4.3. I.A.C. 3.4.4. Irréversible. 3.4.5. Activateurs.
Les AC en biotechnologie
I. Rappel: les origines.II. Structure. 2.1. IgG. 2.2. Classes d'Ig.
TP 3Invertase
17-18 / 10
4. Enz complexes. 4.1. Complexe multi-Ez 4.1.1. Pyr déshydrogénase. 4.1.2. Chaîne respiratoire. 4.2. Allostérie. 4.2.1. Manifestation.
III. Diversité des AC-----> cf + tardIV. AC = outils d'analyse 4.1. Immuno-précipitation. 4.1.1. Complexe immun.. 4.1.2. milieu liquide.
TP 3Invertase
VACANCESA faire pour le 4/11 DM-1 (c’est un lien
qui vaut mieux que deux tu l’auras !)
07-08 / 11 4.2.2. Intérêt physiologique. 4.1.3. milieu gélosé. * Mancini Soutenance
14-15 / 11 DS-1 TP 4Température
Avant
3
date Heure I Heure II TP
21-22 / 11 2.3.3. Contrôle de l’activité enzym Correction DS-1 TP 4
Température
28-29 /125. Outils de production. 5.1. Instrument d’analyse. 5.2. Techniques d’immobil
*Ouchterlony* Immuno-électrophorèse
TP 5pH
05-06 / 12 5.3. Biocapteur. 4.2. Méth immuno-enz 4.2.1. Principe. 4.2.2. Méth qualitatives.
TP 5pH
12-13 / 12 suite 4.2.2. Méth quantitatives.* techniques
TP 6Effecteur I
19-20 / 12 * Méthodes directesTP 6
Effecteur I
VACANCES
Avant
3
date Heure I Heure II TP
09-10 / 01Purification
1. Principe.2. Extrait brut
* Méthodes avec compétitionTP 7
Effecteur II
16-17 / 01 3. Purif 3.1. Précipitations.
4. AC outils d’analyse. 4.1. AC polyclonaux
TP 7Effecteur II
23-24 / 01 3.2. Séparation par membrane. 3.3. Chromatographies. 3.3.1. Principe.
4.2. AC monoclonauxTP 8
isoenzyme
30-31 / 01 3.3.2. Performance. 3.3.3. Chromato classiques.
CCF blanc
STAGE
Avant
3
date Heure I Heure II TP
10-11 / 04 DS-3 TP 8isoenzyme
17-18 / 04
VACANCES
Avant
S Témoin A B C D Emmol.L-1 en µmol.s-1
0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,0 0,05 14,6 9,4 22,0 7,4 6,2 9,18 16,0 12,5 27,8 10,2 9,8 11,2
12 22,5 15,0 28,7 13,6 14,8 14,018 27,0 17,3 42,5 17,6 24,8 18,425 31,9 18,9 44,4 21,0 30,8 18,930 32,1 19,3 46,8 21,1 35,1 21,240 34,6 20,8 50,2 25,8 49,2 21,550 39,6 21,6 53,5 23,8 55,4 22,6
Le tableau donne les vitesses de réaction d'une enzyme seule (témoin) ou en présence d'effecteurs (A, B, C, D et E).
Tracer les graphes et calculer les paramètres enzymatiques par les méthodes:
Lineweaver et Burk.Hanes Wolf.Headie Hofsize.Einsenthal (dans le cas du témoin uniquement).
Envoyer les fichiers Excel à [email protected]
avant le lundi 4 / 11
retour CdT
DM-1
