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Les phytochromes des bactéries photosynthétiques
INTRODUCTION
Les phytochromes ont été découverts chez les plantes il y a environs 50 ans (S. Hendricks et H. Borthwick). Ils constituent une famille de chromoprotéines qui répondent à la lumière rouge/infrarouge.Ils existent sous deux formes absorbant soit lumière rouge soit la lumière infrarouge. Ces deux formes sont photoconvertibles de manière reversible.
Les phytochromes ont un rôle de régulateur. En effet, le changement de forme provoque indirectement l’activation ou la répression de la transcription de gènes cibles. Ils interviennent dans la germination, la floraison, l’évitement de l’ombre, la forme et le nombre de feuilles, la synthèse de chlorophylle…
Ce n’est qu’en 1997, que les phytochromes ont été découverts chez les Cyanobactéries (chez Synechocystis sp. PCC 6803 par Lampartner et al.) puis en 1999 chez différentes bactéries (chez les bactéries nonphotosynthetiques Deinococcus radiodurans et Pseudomonas aeruginosa par Davis et al., chez la bactérie pourpre photosynthetique Rhodospirillum centenum par Jiang et al).
CyanobacteriaSynechocystis sp. PCC6803Anabaena sp. PCC7120Nostoc punctiformeProchlorococcus sp. MED4
1 2 2 0
ProteobacteriaRhodobacter sphaeroidesRhodopseudomonas palustrisBradyrhizobium ORS 278Agrobacterium tumefaciensMagnetospirillum magnetotacticum
2 6 3 2 3
ProteobacteriaPseudomonas aeruginosaPseudomonas fluorescensPseudomonas putida KT2440Pseudomonas syringae
1 1 2 2
DeinococcusDeinococcus radiodurans 1
Deux formes interconvertibles :Une forme Pr (red) absorbant à 650 nmUne forme Pfr (far red) absorbant à 730 nm
Phytochromes = apoprotéine (~ 1100 acides aminés ) + un chromophore (une biline = tetrapyrrole linéaire) responsable de la photoisomérisation. Homodimère de 120kDa.
CBDC NH2 COOH
Longueur d’onde (nm)
Absorbanc
e
Pr
660 nm
Pfr
730 nm
Domaine photorécepteurDomaine régulateur
Biliverdine (bactéries)
Phytochromobiline (plantes)
Phycocyanobiline (cyanobactéries)
NADPH/O2 Hème oxygénase
réductase
réductase
Site de fixation du chromophore : comparaison de différents phytochromes
R. palustris
Bradyrhizobium
A. tumefaciens
Rp.Bph1537/732 aa
Br.Bph/724aaPAS/S-boxes
C
C
PAS/S-boxes
At.BphP/745 aaC
CBD
Histidine kinase
CysB (en N-ter)
Histidine kinase
CSynechocystis Cph1/748aaCBD
A. thaliana
phyB /1172 aa
Histidine kinaseC
PAS PAS
CysA (centrale)
WT H253A
PM WT C19S H253A CSHA
C19S CSHA
C19GAF PHY
CBD PAS PASRpa1537
I252H253
Fluorescence du chromophore biliverdine
CBD
KinaseC
Forme Pfr
NH2COOH
Forme Pr
KinaseC
P
P
P
régulateur
NH2 COOH
Lumière rouge lointain
Lumière rouge
Activation ou répression de
la transcription
de gènes cibles
Lumière rouge
Lumière infrarouge
ON
COOH COOH
N N NO
PfrPr
Lumière rouge
COOH COOH
N N N NO O
La photoisomérisation des phytochromes
CBDC
Forme Pfr
NH2 COOH
Forme Pr
C NH2 COOH
Lumière rouge lointain
Lumière rouge
Activation ou répression de
la transcription
de gènes cibles
Lumière rouge
Domaines PAS Domaines PAS
Interaction protéine-protéine
Transduction du signal par interaction protéine-protéine
Wagner et al Nature Novembre 2005 vol 438,pp325-331
PhotosynthèseCO2
sels minéraux
H2O
1/2 O2 [CH2O]
2 H2O + énergie lumineuse 2 [H2] + O2
2 [H2] + CO2[CH2O] + H2O
2 H2O + CO2 O2 + H2O + [CH2O]h
Van Niel (1931)
Végétaux, algues, micro-algues, cyanobactéries
2 H2O + CO2 [CH2O] + H2O + O2
lumière
Bactéries photosynthétiques
2 H2S + CO2 [CH2O] + H2O + 2 S
2H2 + CO2 [CH2O] + H2O
lumière
pour la plupart actives en condition anaérobie
Rhodopseudomonas palustris
Bactérie photosynthétique capable de se développer à l’obscurité (activité respiratoire) ou à la lumière (activité photosynthétique)
LHII LHIcyt c2
DHCyt oxydase
ATPase
-
+
H+
ADP+Pi ATP
photosynthèse
respiration
commun
Q Q
C.R. cyt bc1
cyt c2
Q
H+
+
_
H+
QH2 oxydase
OxydasesO2+ 4e- + 4H+ 2H2O
LHII LHI
C.R. cyt bc1
cyt c2
-
+
P+
P+ 542 nm
c2551-542 nm
fluorescence
Qa-
Condition anaérobie lumière
B800-850 LH2
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
1,6
400 500 600 700 800 900
absorbance
wavelength (nm)
forte I
faible I
LH1B800 LH2
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
400 500 600 700 800 900
absorbance
wavelength (nm)
condition aérobie obscurité
obs. 8% O2
LH1
B800-850 LH2
obs. 1% O2
(Larimer et al., Nature Biotech.
2004)
rpa0122
rpa1537rpa3016
rpa3015
rpa1490
rpa0990
Environnement génomiques des six bactériophytochromes
Gènes
rpa1537 les polypeptides du centre réactionnel et l’antenne LH1
rpa0122 une succinate deshydrogénase
rpa0990
rpa1490 les polypeptides du B800-850LH2
rpa3015
rpa3016les polypeptides du B800LH2
proches de gènes codant pour
une hydrogénase
Rpa3016
Rpa0122
Rpa3015H N D/F GC
GAF PHY
CBD HK
C H N D/F GGAF PHY
CBD HK
H? N D/F GCGAF PHY
CBD HK
H N? GCGAF PHY
CBD HK (KWE) RR
CBDRpa1490
N G?GAF PHY
HK ?
?
Rpa0990
CGAF PHY
CBD PAS PACRpa1537
pBAD/phyto+HmuO6968 bp
rpaBphy
ampr
araC
hmuO
Tag.His
Pm.araBAD
pUC ori
Expression in vivo des holobactériophytochromes
not-inducedinduced
Rpa3015 Rpa3016 Rpa1053 Rpa1490 Rpa0990 Rpa1537
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
300 400 500 600 700 800
Absorbance
Wavelength (nm)
Rpa0990
Pr
Pfr
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
300 400 500 600 700 800
Absorbance
Wavelength (nm)
Rpa0122Pfr
Pr
HmuOPpsR2
cycA
bchC
bchX
bchYbchZ
bchG
bch2
bchP
ppsR1 crtKcrtC
crtD
crtE
crtF
puf operon
BA L M rpa1537
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
250 350 450 550 650 750 850
absorbance
wavelength (nm)
obscurité Pfr
excitation 760 nm Pr
Spectre d’action de la synthèse de l’appareil photosynthétique
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
250 350 450 550 650 750 850
absorbance
wavelength (nm)
Pr
Pfr
Spectre d’action de la synthèse de l’appareil photosynthétique
fusion bchC::lacZ
wavelength (nm)
0
25
50
75
100
600 650 700 750 800 850
activity fusion puf::lacZ
fluorescence
souche sauvage
obs. 660 nm 750 nm
∆rpa1537
750 nm
DNA binding of PpsR on different promotor regions
A : controlB : + PpsRC : + PpsR
bchCXYZ
A B C A B C A B C
crtIBcrtED
Effet de la lumière sur la synthèse de l’appareil photosynthétique
0
50
100
dark 740 nm
∆bphP WT
∆ppsR
cyt c2 photooxidation (nM)
Rpa1537 détecte la présence de lumière, il active la synthèse des CRs et des complexes antennaires en levant la répression exercée par le facteur de transcription PpsR2 en
condition semi-aérobie.
PfrPpsR Bchl, puf gènes
DNA
A l’obscurité en présence d’ O2
Pr
synthèse de l’appareil photosynthétique
A la lumière
PpsR
Oxydation du TMPDTransmission lumineuse
Fluorescence de la Bchl
721 803
622
590
652 733
852
870
705 772
677 746
721 803
622
590
652 733
852
870
705 772
677 746
721 803
622
590
652 733
852
870
705 772
677 746
Effet de l’éclairement à 770 nm sous 8% d’oxygène
Effet de l’éclairement à 770 nm sous 8% d’oxygène
� �
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
0 10 20 30 40 50
Temps (h)
Do
(660
nm)
Obscurité
Eclairement � 770 nm
Inhibition de croissance de 30% en moyenne pour les bactéries des cultures éclairées
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
1,6
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
1,6
WT ∆1537 ∆0122 ∆0990 ∆ppsR
obscurité
illumination 770 nm
2
Activité photosynthétique
Rpa1537 détecte la présence de lumière, il active la synthèse des CRs et des complexes antennaires en levant la répression exercée par le facteur de transcription PpsR2 en condition semi-aérobie. De plus Rpa1537 suprime partiellement l’activation de la
synthèse de l’appareil respiratoire induite par PpsR2.
rpa1490rpa1491
B800-850 LH2pucA.e
pucB.e
PpsR
RR HTH
Rpa1490 ne fixe pas de chromophore
Rpa3015 Rpa3016 Rpa1053 Rpa1490 Rpa0990 Rpa1537
Rpa 1490 MHSGLDNSAELRVSDFDPITLAGGTRTEV-LPGA
Rpa 1537 MAGHASGSPAFGTADLSNCEREEIHLAGS
Rpa 3015 MTEGSVARQPDLSTCDDEPIHIPGA
Rpa 3016 MSSRSDPGQPMASATDPSGRLALDLTECDREPIHIPGA
Rpa 0122 MDEADSGGIVTARNVDLSSCDREVQYPEA
Rpa 0990 MPRKVDLTSCDREPIHIPGS
C
L’état d’oligomérisation de Rpa1490 est redox sensible
Rpa1491
Natif +DTT +DTT +Rpa1491
•Rpa1490 s’autophosphoryle sous
sa forme réduite•Phosphotransfert vers
Rpa1491
Natif +FeCy +DTT +DTT+FeCy
Rpa1490
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
400 500 600 700 800 900
absorbance
wavelength (nm)
WT dark 1% O2
∆1490 dark 1% O2
Rpa1490 n’est pas un bactériophytochrome mais un senseur d’O2 impliqué dans la régulation de la synthèse des
complexes B800-850LH2.
pucA.d
pucB.d rpa3015 rpa3016
rpa3018
rpa3017
rpa3014
RECRpa3018
HK
REC Rpa3017
Rpa3014HTHREC
taux de similarité : 67%
Rpa3015 et Rpa3016
B800LH2
0
0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
0,3
0,35
0,4
-0,05
0
0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
0,3
0,35
0,4
250 350 450 550 650 750 850
absorbance
wavelength (nm)
Rpa3015Pr
Pfr
obs.
exc. 705 nm
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
-0,1
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
250 350 450 550 650 750 850
absorbance
wavelength (nm)
Rpa3016
Pr
Pnr for near red
obs.
exc. 705 nm
exc. 645 nm
��
��
�
��
��
��
�
-15
-10
-5
0
5
10
15
-0,5 0 0,5 1 1,5 2
Time (s)
∆A 400 nm
Vitesses initiales
Pnr Pr
Pr Pnr
Rpa3016
Rpa3015
Pfr Pr
Pr Pfr
Rpa3015 et Rpa3016 s’autophosphorylent sous leur forme Pr
Rpa3015/3016
Rpa3018
Rpa3017
Rpa3014
Phosphotransfert vers 2 réponses régulateurs Rpa3017 ou Rpa3018
Rpa3014 + - - Rpa3018 - + - Rpa3017 - - +
Rpa3016Rpa3015705 nm obs. obs. 705 nm
P32
Prot
17% 100% 100% 55%
0
0,5
1
1,5
2
2,5
3
550 600 650 700 750 800 850 900
A805/A860
longueur d’onde (nm)
B
750 770 790 810 830 850 870 890 910 930 950
absorption
longueur d’onde (nm)
751 nm
712 nm
701 nm
677 nm
637 nm
651 nm
AB800LH2
Contrôle des antennes de type B800LH2 par Rpa3015 et Rpa3016
Rpa3016 and Rpa3015 détectent le rapport des intensités lumineuses entre 650 et 710 nm. Ils induisent la synthèse des complexes B800LH2 lorsque ce rapport est faible. Ils agissent peut être comme détecteurs de phytoplanctons.
Identification d’un nouveau bactériophytochromechez Bradyrhizobium ORS278
278.phyB3
hemA phycocyanobiline oxydo reductase
Heme oxygenase
gvpF gvpNgvpL
gvpG
gvpA
gvpOgvpK
-2
0
2
4
6
8
10
12
14
-4 -2 0 2 4 6 8 10 12
∆A.10-2 à 670 nm
temps (s)
0
0,5
1
1,5
0 100200300400500600700800
∆A
micro mol photons/m2/s
-2500
-2000
-1500
-1000
-500
0
500
1000
1500
2000
600 620 640 660 680 700 720 740 760 780 800
∆A
wavelength (nm)
1ms 8ms 20ms 50ms 100ms 200ms 500ms
Rpa3015
-500
0
500
1000
1500
2000
-100 0 100 200
∆A
time (ms)
-2000
-1500
-1000
-500
0
500
1000
1500
2000
600 620 640 660 680 700 720 740 760 780
∆A
wavelength (nm)
1ms 8ms 20ms 50ms 100ms 200ms 500ms
-500
0
500
1000
1500
2000
-100 0 100 200
∆A
time (ms)
Rpa3016