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Posters / Transfusion Clinique
endant cette longue période d’aplasie, nous avons du sélectionner et convoqueres donneurs de CP HLA compatibles en région Rhône-Alpes et au niveauational.e cas illustre la nécessité d’une étroite collaboration entre les différents servicese l’EFS que sont le laboratoire HLA, le service de prélèvement, la gestion destocks et la distribution permettant une prise en charge optimale et personnaliséees patients.
ttp://dx.doi.org/10.1016/j.tracli.2013.03.181
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rotocole de prise en charge transfusionnelle d’uneémorragie massive en réanimation-déchocage au CHU derenoble
. Giroux-Lathuile a, J. Brun b, M. Francois a,∗, S. Anselme-Martin a,. Albaladejo b
EFS Rhône Alpes, Grenoble, FranceCHU de Grenoble, Grenoble, FranceAuteur correspondant.dresse e-mail : [email protected] (M. Francois)
e CHU de Grenoble accueille une activité importante de traumatologie lourdessociée à des hémorragies massives.’éloignement relatif de site EFS (cinq minutes à pied) nous oblige à uneéflexion quant à la mise à disposition de PSL en UVI avec la mise en placee pré-conditionnement de CGR thermotracés en valises isothermes.fin d’optimiser la prise en charge des hémorragies massives en réanimation-échocage tout en diminuant les destructions de PSL, un protocole « reflexe » até initié.e protocole définit des séquences transfusionnelles avec pré-conditionnementes PSL par l’EFS :pack 1 : quatre CGR O + ou O– ;pack 2 : quatre CGR O + ou O–, quatre PFC, un concentré plaquettaire ;pack 3 : quatre CGR O + ou O–, quatre PFC.a poursuite du protocole se fait en fonction de l’évolution clinique du patientt du suivi des paramètres biologiques.ans le même temps, les examens d’immuno-hématologie sont réalisés permet-
ant d’adapter la délivrance en isogroupe.u côté EFS, ce protocole nécessite une organisation sans faille : des valisese CGR prêtes à l’emploi sont conditionnées et conservées à 4 ◦C, les PFC deroupe AB sont pré-conditionnés dans l’attente d’une décongélation et d’uneélivrance rapide.es conduites systématisées simplifiées présentent l’avantage d’une rapidité’exécution et de mise à disposition des PSL dans un souci d’épargne desessources.
ttp://dx.doi.org/10.1016/j.tracli.2013.03.182
7. Biothérapies et greffes (cellules hématopoïétiques,ellules souches, médecine réparatrice, immunothérapie)
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ryoconservation de cellules souches et progénitricesématopoïétiques amplifiées ex vivo à partir de cellulesD34+ de sang placentaire
. Ivanovic a, P. Duchez a,∗, J. Chevaleyre a, M. Vlaski a,. Brunet de la Grange a, G. Wouters b
EFSAqli, Bordeaux, FranceFAT STEM, Buggenhout, BelgiqueAuteur correspondant.dresse e-mail : [email protected] (P. Duchez)
otre protocole d’expansion de cellules CD34+ de sang placentaire qui per-et d’amplifier les progéniteurs engagés sans diminuer les cellules souches
ématopoïétiques assurant une greffe à long et à court terme fait actuellement
Spd
ologique 20 (2013) 295–369 343
’objet d’un essai clinique contexte allogénique adulte dont les résultats sontrometteurs. Ainsi, si la greffe de cellules de sang placentaire amplifiées exivo devient une réalité, elle se confronte au problème de la cryoconserva-ion du produit d’expansion afin d’assurer sa conservation pour le transportt une utilisation future. C’est pourquoi nous avons exploré la possibilité deaintenir les propriétés fonctionnelles des CSH et des progéniteurs engagés
près congélation et décongélation des cellules amplifiées ex vivo en comparante protocole standard de cryoconservation (albumine humaine – (HSA)/DMSO)vec un protocole inédit basé sur une solution de congélation enrichie (milieuP01/DMSO). L’étude de l’indice de viabilité, du nombre de CD34+ ete cellules totales, et du rendement de progéniteurs engagés et de cel-ules souches hématopoiétiques (CSH) indique que la cryoconservation et laécongélation des cellules de sang placentaire HSA/DMSO réduit de faconignificative les progéniteurs engagés (40 %) et les cellules souches hémato-oïétiques (diminution drastique de la capacité de greffe des souris NSG).n revanche le protocole HP01/DMSO améliore la préservation des progéni-
eurs engagés (> 60 %) sans altérer la capacité de greffe des cellules souchesématopoïétiques.insi, le maintien fonctionnel de la greffe amplifiée ex vivo par cryoconservation
st faisable en conditions compatibles avec les exigences de thérapie cellulaireumaine.
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onservation des cellules souches hématopoïétiques dans leang placentaire (SP) jusqu’à 72 h après prélèvement à4 ◦C. Ivanovic a, L. Rodriguez a, M. Plainfosse b, P. Duchez a,∗, J. Chevaleyre a,. Dazey a, B. Delorme b
EFSAqli, Bordeaux, FranceMacopharma, Tourcoing, FranceAuteur correspondant.dresse e-mail : [email protected] (P. Duchez)
ous avons concu et validé un procédé innovant de conservation à 72 h des uni-és de sang placentaire (USP) par utilisation d’un milieu de préservation (GMP,éfini, xéno free) aux propriétés nutritives et anti-oxydatives associé à une pochemperméable au gaz (Macopharma, France) Cela afin d’assurer un environne-
ent de conservation optimal des cellules souches et progénitrices du SP, toutn évitant l’effet néfaste de l’hyper-oxygénation (O2 atmosphérique = 21 %) sures cellules d’intérêt (O2 sang placentaire = 1,5 à 3 %).ne étude comparative, menée sur des USP ainsi maintenues à 72 h versus desSP prélevées selon la routine actuelle à 24 h, a montré :un maintien équivalent en nombre des cellules CD34+ et des CFU ;le maintien de la totalité des cellules souches (Scid Repopulating Cells [SRC])72 h, alors qu’elles déclinent significativement si le SP est prélevé selon la
outine.et avantage qualitatif est maintenu après miniaturisation (Sepax®, Biosafe,uisse), congélation, et décongélation des USP. À l’inverse, le rendement desellules nucléées totales (CNT) après conservation 72 h et miniaturisation estoindre de 30 %, par rapport à une USP de la routine (miniaturisé à 24 h).ette baisse, due à une perte des granulocytes, est annulée par la congéla-
ion/décongélation des USP après laquelle le nombre de CNT est alors similaire.e nouveau procédé de conservation des USP pendant trois jours à +4 ◦C permetonc un maintien optimum de la capacité hématopoïétique des USP stockées,es délais plus longs pour manipuler et stocker les USP, des prélèvements danses maternités géographiquement éloignées des banques, ainsi que l’inclusion’USP prélevées les week-ends.
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tabilité fonctionnelle à +4 ◦C des cellules souches etrogénitrices hématopoïétiques amplifiées ex vivo à partire cellules CD34+ de sang placentaire
